2021年03月02日，杜克大學醫(yī)學中心的分子遺傳學和微生物學系Stacy M. Horner教授團隊在《Cell Reports》（IF: 9.995）雜志發(fā)表了題為“Post-transcriptional regulation of antiviral gene expression by N6-methyladenosine”的研究論文，研究通過MeRIP-seq（m6A-seq）等實驗揭示了m6A在抗病毒限制的I型干擾素（interferon，IFN）響應期間對IFN刺激基因（IFN-stimulated genes ，ISG）翻譯的轉(zhuǎn)錄調(diào)控機制。

標題：Post-transcriptional regulation of antiviral gene expression by N6-methyladenosine

時間：2021.03.02

期刊：Cell Reports

影響因子：IF 9.995

技術(shù)平臺：MeRIP-seq、RNA-seq、Ribo-seq、MeRIP-qRT-PCR、熒光素酶活性分析實驗等

研究摘要

I型干擾素（interferon，IFN）通過誘導數(shù)百種IFN刺激基因（ISG）來響應病毒感染，必須調(diào)節(jié)這些ISG的誘導以實現(xiàn)有效和可調(diào)控的抗病毒感染響應，但這些基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控機制尚不明確。本研究首先鑒定了RNA堿基修飾N6-甲基腺苷（m6A）在ISG調(diào)控中的作用，通過Ribo-seq和定量質(zhì)譜法結(jié)合m6A免疫沉淀測序（MeRIP-seq）分析，鑒定出包含IFITM1的ISG亞群，其翻譯通過m6A和m6A甲基轉(zhuǎn)移酶蛋白METTL3和METTL14增強。研究進一步表明m6A識別蛋白（readers）YTHDF1以m6A結(jié)合依賴性方式上調(diào)IFITM1表達，且m6A甲基轉(zhuǎn)移酶復合體可以促進I型IFN的抗病毒活性?？傊?，本研究表明m6A在抗病毒限制的I型IFN響應期間對ISG翻譯的轉(zhuǎn)錄調(diào)控中發(fā)揮作用。

實驗結(jié)果

（1）METTL3/14調(diào)節(jié)某些ISG的翻譯

IFN-β通過誘導ISG轉(zhuǎn)錄形成對病毒感染的響應。為研究m6A是否調(diào)節(jié)I型IFN響應，本研究對Huh7細胞中m6A甲基轉(zhuǎn)移酶復合體METTL3/14缺失后，IFN-β誘導的幾種具有抗病毒功能的ISG表達進行檢測。在METTL3/14敲除后，IFN-β誘導的ISG IFITM1和MX1蛋白表達降低（圖1A），同時在A549細胞、原代新生兒人真皮成纖維細胞（NHDF）和Huh7細胞中IFN-β處理后的多個時間點（8h、16h和24h）觀察到相似結(jié)果；但MX1蛋白水平在A549和NHDF細胞中的影響不如在Huh7細胞中強烈。而為響應IFN-β，METTL3/14過表達增加了Huh7細胞中的IFITM1和MX1豐度，但沒有增加ISG15和EIF2AK2的豐度（圖1B）。METTL3/14調(diào)節(jié)的ISG IFITM1和MX1在沒有IFN-β的情況下不表達，表明METTL3/14動態(tài)變化對內(nèi)源性IFN-β的任何混雜效應可以忽略不計（圖1A和1B）。

圖1：METTL3/14調(diào)節(jié)某些ISG的翻譯

（A-B）在模擬或IFN-β（24h）處理之前，用siRNA轉(zhuǎn)染METTL3/14（M3/14）或?qū)φ眨?span>CTRL）（A）或穩(wěn)定過表達FLAG-METTL14（M3/14OE；上箭頭表示FLAG-METTL14；下箭頭表示內(nèi)源性METTL14）（B）的Huh7細胞提取物的免疫印跡分析。相對于非靶向?qū)φ眨?span>siCTRL）+IFN-β（A）或WT+IFN-（B），對A和B中4個重復的相對ISG表達進行定量。

（C-E）用CTRL或METTL3/14 siRNA轉(zhuǎn)染后經(jīng)IFN-β處理的Huh7細胞提取物中分離24個蔗糖梯度級分中的IFITM1（C）、MX1（D）和GAPDH（E）mRNA相對百分比qRT-PCR分析。未初始化（游離、40S和60S亞基）、初始化（80S）、低分子量或高分子量多核糖體。右邊的圖表顯示了IFITM1、MX1或GAPDH組合級分中的mRNA百分比。將各部分的百分比相加得出各類別的總百分比。

數(shù)值為4個生物學重復（A和B）的平均值±SEM，3個技術(shù)重復平均值±SD，表示3個實驗（C–E，左圖）和3個生物學重復的平均值±SEM（C–E，右圖）。*非配對Student's t檢驗（A和B）和Sidak多重比較檢驗的雙向方差分析（C–E），*p<0.05，***p<0.01，***p<0.005，ns，不顯著。

 

為研究METTL3/14如何調(diào)節(jié)某些ISG的蛋白水平，研究首先分析METTL3/14缺失是否導致ISG mRNA對IFN-β響應減少。同時，在IFN-β處理后使用RNA測序（RNA-seq），結(jié)果顯示METTL3/14缺失對核心ISG的mRNA表達豐度影響很小，表明ISG RNA穩(wěn)定性不受METTL3缺失的影響。

由于METTL3/14缺失導致IFITM1和MX1蛋白減少而不影響其轉(zhuǎn)錄水平，本研究分析METTL3/14是否調(diào)節(jié)其蛋白穩(wěn)定性。研究結(jié)果表明METTL3/14不能檢測到Huh7細胞中這些ISG的出核或蛋白質(zhì)穩(wěn)定性。

為了檢測METTL3/14是否調(diào)節(jié)IFITM1翻譯，作者檢測了其在對照細胞或IFN-β處理后METTL3/14缺失的細胞中的多核糖體（polysome）百分比。結(jié)果顯示METTL3/14缺失不改變總多核糖體水平，但METTL3/14缺失會導致80S級分中IFITM1 mRNA水平較低，且從重多核糖體級分轉(zhuǎn)換為輕多核糖體級分（圖1C），表明METTL3/14缺失后IFITM1翻譯受損。另外，在MX1（圖1D）中也觀察到類似但不太明顯的變化，但在GAPDH（圖1E）中沒有觀察到?？傊Y(jié)果表明，METTL3/14調(diào)節(jié)某些ISG的翻譯，如IFITM1和MX1。

 

（2）METTL3/14調(diào)節(jié)的ISG被m6A修飾

為確定METTL3/14調(diào)節(jié)的ISG IFITM1和MX1以及其他ISG是否被m6A修飾，研究通過使用甲基化RNA免疫沉淀測序（MeRIP-seq）在Huh7細胞中繪制了IFN誘導的轉(zhuǎn)錄組m6A圖譜，在鑒定出ISG后，將m6A免疫沉淀后reads覆蓋率的peaks，與使用MeTDiff m6A peaks calling的input進行比較。結(jié)果顯示mRNA peaks在編碼序列末端和3′UTR起始位點富集（圖2A）。peaks內(nèi)最富集的RNA序列motif為[U/A]GGAC，這與DRAmC已知m6A motif匹配（圖2A）。約85%的ISG（分類為IFN后上調(diào)超過4倍的ISG）被m6A修飾，而Huh7細胞表達轉(zhuǎn)錄組中比例為74%（平均覆蓋率≥10）（圖2B）。該結(jié)果與先前的研究一致，該研究發(fā)現(xiàn)ISG以與轉(zhuǎn)錄組相似的百分比進行m6A修飾。m6A修飾的ISG百分比在其他類別的ISG中相似，包括脊椎動物中進化保守的“核心”ISG和具有已知抗病毒功能的核心ISG的14個亞群（圖2B）。接下來，利用MeRIP-seq數(shù)據(jù)生成了IFITM1、MX1、ISG15和EIF2AK2圖，并使用m6A peaks calling 方法MeTDiff和meRIPPer揭示METTL3/14調(diào)節(jié)基因IFITM1和MX1具有m6A peaks（圖2C和2D），而ISG15和EIF2AK2沒有m6A peaks（圖2E和2F），這些圖表明ISG15的3'UTR也可能包含m6A位點（圖2E）。將MeRIP-seq實驗中ISG的m6A狀態(tài)與已發(fā)表的研究數(shù)據(jù)進行比較，比較結(jié)果顯示在所有研究中核心抗病毒ISG的m6A狀態(tài)預測一致。dsDNA處理有效地激活IFN產(chǎn)生并誘導本實驗中發(fā)現(xiàn)的相同核心抗病毒ISG的m6A修飾。HCMV感染也導致某些ISG的m6A修飾，這種病毒編碼抑制IFN信號因子；因此ISG可能不像dsDNA或IFN-β處理那樣強烈誘導。m6A在許多ISG上的存在表明m6A可以調(diào)節(jié)抗病毒I型IFN響應。

圖2：METTL3/14調(diào)節(jié)的ISG由m6A修飾

（A） 在IFN-β處理（8h）后，轉(zhuǎn)錄組范圍內(nèi)的m6A分布Metagene圖，繪制了具有統(tǒng)計學意義的peaks 中DRACH motif位點相對位置，以及peaks中最富集的motif。

（B） 在表達的轉(zhuǎn)錄組中由m6A修飾的基因百分比，響應于IFN-β處理（ISG）的mRNA誘導≥4倍的基因，脊椎動物中保守的核心ISG，或具有抗病毒功能的核心ISG亞群。

（C-F）在IFITM1（C）、MX1（D）、ISG15（E）和EIF2AK2（F）轉(zhuǎn)錄本中MeRIP（紅色）和input（黑色）reads覆蓋圖。生物學重復的差異由reads覆蓋范圍周圍的紅色和黑色陰影表示，灰色陰影表示編碼序列，黃色陰影表示由MeTDiff和meRIPPer的m6A peaks calling軟件。所有分析均在3個生物學重復上進行。

 

（3）IFITM1在3′UTR中的m6A修飾增強了其翻譯

m6A增強了某些mRNA的翻譯。具體而言，m6A識別蛋白（readers）YTHDF1在3′UTR內(nèi)識別m6A，并與真核翻譯起始因子（如eIF3）結(jié)合，以增強m6A修飾轉(zhuǎn)錄本的翻譯。為METTL3/14對ISG的翻譯調(diào)節(jié)是否是通過m6A誘導，研究使用IFITM1作為METTL3/14調(diào)節(jié)的ISG模型。首先確定METTL3/14缺失對IFITM1 m6A修飾的影響。MeRIP-qRT-PCR結(jié)果表明IFITM1 mRNA在m6A陰性ISG EIF2AK2和m6A陰性合成RNA中富集，證實其含有m6A。METTL3/14缺失降低了IFITM1 mRNA的m6A富集，但沒有降低m6A陰性EIF2AK2轉(zhuǎn)錄本或m6A陰性合成RNA的富集（圖3A和3B），數(shù)據(jù)表明IFITM1是由METTL3/14修飾的m6A。

圖3：IFITM1在 3'UTR中的m6A修飾增強了翻譯

（A） 在用siCTRL或METTL3/14 siRNA處理并摻入m6A陰性（NEG）寡核苷酸的Huh7細胞中，由IFN-β（8h）誘導的ISG的相對m6A水平的代表性MeRIP qRT-PCR分析。

（B） A中5個生物學重復每個基因的相對富集百分比，歸一化為siCTRL。

（C） 野生型（WT）和突變型ISRE-m6A缺失的Renilla熒光素酶（R-Luc）IFITM1 3'UTR報告基因示意圖，該報告基因也從單獨的啟動子表達m6A缺失的螢火蟲熒光素酶（F-Luc）。

（D）經(jīng)IFN-β（8h）處理的轉(zhuǎn)染Huh7細胞的WT和m6A-mut IFITM1 3'UTR報告RNA的相對m6A水平的MeRIP-qRT-PCR分析。

（E）用siRNA轉(zhuǎn)染的Huh7（24h）、然后進行報告基因轉(zhuǎn)染（24h）和用IFN-β處理（8h）的WT和m6A-mut IFITM1 3'UTR報告基因RNA的相對m6A水平的MeRIP-qRT-PCR分析，。

（F） 報告基因轉(zhuǎn)染（24h）和IFN-β處理（8h）后，在Huh7細胞中歸一化為HPRT1的WT和m6A-mut IFITM1 3'UTR報告基因mRNA表達的qRT-PCR分析。

（G） IFN-β誘導的WT和m6A-mut IFITM1 3′UTR報告基因中的相對螢光素酶活性（R-Luc/F-Luc）（相對于模擬8h）。

 

在鑒定出IFITM1是m6A修飾之后，接下來生成了一個熒光素酶報告基因，其中包含IFN刺激的響應元件（ISRE）-啟動子驅(qū)動的Renilla螢光素酶，所有DRAC motif被敲除（m6A-null R-Luc），然后與野生型（WT）IFITM1 3′UTR或類似的3′UTR序列結(jié)合，IFITM1中3′UTR m6A peaks中的四個推定m6A motif從A→G轉(zhuǎn)換（m6A-mut）（圖3C）。分析數(shù)據(jù)結(jié)果表明， METTL3/14通過向3'UTR添加m6A修飾來調(diào)節(jié)IFITM1翻譯，并且IFITM1 3'UTR內(nèi)的m6A修飾足以增強其翻譯。

 

（4）YTHDF1以m6A依賴性方式增強IFITM1蛋白表達

為檢測YTHDF1是否誘導m6A對ISG的翻譯促進作用，研究人員在Huh7細胞中穩(wěn)定過表達YTHDF1（H7Y1）或m6A結(jié)合缺陷型YTHDF1蛋白（H7Y1mut）并分析其相對于親本Huh7細胞（H7）在24h后IFN誘導的ISG表達。YTHDF1過表達增加響應IFN-β的IFITM1蛋白表達，而m6A結(jié)合缺陷型YTHDF1蛋白（H7Y1mut）的過表達不增加IFITM1豐度（圖4A和4B）。且野生型（WT）和突變型YTHDF1過表達不會顯著影響IFN-β處理后的IFITM1 mRNA水平，表明YTHDF1不直接調(diào)控IFN信號或IFITM1 mRNA穩(wěn)定性（圖4C）。YTHDF1過表達顯著改變IFN誘導的含m6A的ISG MX1表達，或不含m6A的ISG ISG15和EIF2AK2表達（圖4A和4B）。而在IFN-β處理后，YTHDF1缺失會導致IFITM1蛋白表達降低，但MX1、ISG15和EIF2AK2未受影響（圖4D）。另外，WT YTHDF1與IFITM1、MX1、ISG15和m6A陽性對照SON的轉(zhuǎn)錄本結(jié)合，而m6A結(jié)合缺陷型YTHDF1突變蛋白則沒有結(jié)合。含有非m6A的mRNA EIF2AK2和RPL30不與任一蛋白結(jié)合（圖4E和4F）。總之，這些結(jié)果表明YTHDF1與IFITM1 mRNA上的m6A結(jié)合，且通過其m6A結(jié)合活性增強其翻譯是必要和充分的。YTHDF1與ISG15 mRNA明顯的m6A依賴性結(jié)合表明ISG15 mRNA實際上是m6A修飾。在ISG15 mRNA的input reads與MeRIP-seq reads的關(guān)聯(lián)圖揭示了其3'UTR中m6A富集的潛在區(qū)域（圖2E）。因此，YTHDF1在促進翻譯中具有轉(zhuǎn)錄本特異性作用，因為它結(jié)合了IFITM1、MX1和ISG15的轉(zhuǎn)錄本，但其過表達僅足以顯著增加IFITM1的蛋白生成。

圖4：YTHDF1以m6A依賴性方式增強IFITM1蛋白表達

（A） 在模擬或IFN-β（24h）處理后穩(wěn)定過表達FLAG-YTHDF1 WT（Huh7Y1）或FLAG-YTHDF1 W465A（Huh7Y1mut）的Huh7細胞提取物的免疫印跡分析。

（B） A的3個獨立實驗中IFN-β處理后ISG表達定量，歸一化為總蛋白并相對于siCTRL繪圖。

（C） 在IFN-β（24h）處理后穩(wěn)定過表達FLAG-YTHDF1 WT（Huh7Y1）或W465A（Huh7Y1mut）的Huh7細胞中歸一化為HPRT1的ISG mRNA表達的qRT-PCR分析。

（D） 在模擬或IFN-β（24h）處理之前，用siRNA轉(zhuǎn)染YTHDF1（siY1）或siCTRL的Huh7細胞提取物的免疫印跡分析。數(shù)據(jù)代表3個獨立的生物學實驗。

（E） 與IFN-β（8h）處理后Huh7細胞的FLAG-GFP相比，FLAG-YTHDF1 WT（Y1）或W465A（Y1mut）的免疫沉淀（IP）后mRNA富集的qRT-PCR分析。將IP值歸一化為input值并繪制為GFP的倍數(shù)富集。

（F） E中使用的FLAG免疫沉淀和input級分的免疫印跡分析。

 

（5）METTL3/14和m6A促進ISG亞群的翻譯

為鑒定蛋白表達受METTL3/14調(diào)節(jié)的其他ISG，使用基于定量質(zhì)譜的蛋白質(zhì)組學和氨基酸穩(wěn)定同位素標記（SILAC）來比較IFN-β處理后siCTRL和siMETTL3/14細胞的蛋白質(zhì)組。與siCTRL相比，siMETTL3/14對蛋白豐度的影響集中在大多蛋白質(zhì)的對數(shù)比為0，表明METTL3/14缺失對IFN-β處理后的蛋白質(zhì)水平?jīng)]有整體影響。在先前的RNA-seq實驗中，將ISG定義為通過IFN-β處理上調(diào)>2倍的基因來確定哪些蛋白是ISG。盡管質(zhì)譜法檢測ISG有限（n=18），但鑒定出一些METTL3/14調(diào)節(jié)的ISG（圖5A；MS）。METTL3/14缺失后，大多數(shù)這些ISG的蛋白表達降低，且這些ISG包括先前鑒定的m6A修飾的IFITM1（對應于IFITM1/2/3的肽）和MX1，以及其他抗病毒ISG如OAS2和不同的HLA-C鏈（圖5A），均由m6A修飾。通過將這些數(shù)據(jù)與之前的RNA-seq實驗數(shù)據(jù)進行比較，結(jié)果表明METTL3/14對這些ISG蛋白水平的影響不由其mRNA表達調(diào)節(jié)來確定，因為METTL3/14缺失后，本實驗中在蛋白水平上降低的ISG的mRNA豐度沒有降低，表明翻譯調(diào)控如先前對IFITM1和MX1的多核糖體分析所表明結(jié)果一致（圖1C和1D；圖5A，RNA）。并非所有通過質(zhì)譜法鑒定的m6A修飾的ISG都受METTL3/14缺失調(diào)節(jié)（圖5A；m6A），表明METTL3/14和m6A調(diào)節(jié)ISG的亞群并支持其蛋白表達。

圖5：METTL3/14調(diào)節(jié)ISG亞群的翻譯

（A） 3列熱圖顯示了IFN-β處理后METTL3/14缺失對Huh7細胞中ISG表達的影響。第一列顯示定量質(zhì)譜法檢測蛋白質(zhì)估計值的log2倍變化（siMETTL3/14與siCTRL + IFN-β 24 h；n=2個生物學重復）。第二列顯示獨立RNA-seq實驗（siMETTL3/14與siCTRL + IFN-β 8 h；n=3個生物學重復）的mRNA reads的log2倍變化。第三列顯示MeRIP-seq數(shù)據(jù)的m6A狀態(tài)（+表示m6A陽性；-表示m6A陰性）（+IFN-β 8h；n=3個生物學重復）?；虬?span>RNA-seq的IFN誘導超過2倍的任何ISG，這些ISG也可以通過質(zhì)譜法檢測到，其他圖中的ISG以粗體顯示。由于IFITM1/2/3相似，因此使用此表示法表示從該蛋白質(zhì)家族中檢測到的肽；RNA-seq倍數(shù)變化和m6A狀態(tài)對應于帶下劃線的數(shù)字，調(diào)整后*p<0.05。

（B） METTL3/14缺失對ISG表達影響的四象限散點圖。y軸是Ribo-seq的核糖體保護片段的log2倍變化（siMETTL3/14超過siCTRL），x軸是來自獨立RNA-seq實驗的mRNA讀數(shù)的log2倍變化（siMETTL3/14與siCTRL）。m6A修飾（藍色）或m6A陰性（灰色）基因。對其他圖中的ISG進行了標記。

 

（6）METTL3/14增強了IFN響應的抗病毒作用

METTL3/14在I型IFN響應期間增強ISG亞群表達，表明它可能是最佳抗病毒所必需。研究人員檢測了METTL3/14動態(tài)變化后I型IFN限制負義鏈RNA病毒水泡性口炎病毒（vesicular stomatitis virus，VSV）感染的能力。VSV基因組包含了m6Am帽修飾，但由于這種修飾沉積不受METTL3/14調(diào)控，因此VSV復制可能不會受到METTL3/14動態(tài)變化的直接影響，而對VSV復制的任何影響可能由宿主轉(zhuǎn)錄本的甲基化介導。通過使用小干擾RNA（siRNA）或過表達來干擾METTL3/14的表達，然后使用顯微鏡在存在和不存在低劑量IFN-β預處理（6h；40U/mL）的情況下，檢測感染后6小時被VSV感染的細胞百分比。在感染后早期時間點檢測VSV感染，可以在感染直接誘導的ISG細胞上調(diào)之前檢測到病毒復制。結(jié)果顯示，在沒有IFN-β預處理的情況下，任何條件下都沒有看到VSV誘導ISG（圖6A和6B）。通過免疫印跡或定量感染細胞百分比分析來檢測VSV復制，在沒有IFN-β處理情況下，METTL3/14缺失或過表達沒有變化（圖6）。在IFN-β預處理后，METTL3/14缺失導致METTL3/14調(diào)節(jié)的ISG表達降低（圖6A），而METTL3/14過表達則上調(diào)其表達（圖6B）。盡管IFN-β預處理減少了VSV病毒復制，但METTL3/14缺失降低了IFN-β限制VSV的能力，而METTL3/14過表達則會增強IFN介導的VSV限制（圖6）?？傊@些數(shù)據(jù)表明METTL3/14增強了I型IFN的抗病毒特性，是有效IFN介導的抗病毒響應所必需的。

圖6：METTL3/14增強了I型IFN響應的抗病毒作用

（A-B） 用siRNA（A）轉(zhuǎn)染或穩(wěn)定過表達FLAG-METTL14的Huh7細胞提取物的代表性免疫印跡分析（n=3），其也增強METTL3表達（M3/14OE）；用IFN-β（6h）或模擬物處理，然后進行VSV感染（MOI=2；6h）（B）。箭頭表示FLAG-METTL14（上）和內(nèi)源性METLL14（下）。

（C-D） 用siCTRL或METTL3/14 siRNA（C）或穩(wěn)定過表達FLAG-METTL14（METTL3/14OE；D）處理的Huh7細胞的代表性顯微圖，這些細胞用IFN-β預處理（6h），然后進行VSV感染（MOI=2；6h），對3個獨立實驗感染的細胞百分比進行定量，每個條件5個視野，每個視野>150個細胞，歸一化為未經(jīng)IFN處理的siCTRL或WT，如右圖所示。比例尺：100μm。

 

關(guān)于易基因RNA m⁶A甲基化測序(MeRIP-seq)技術(shù)

易基因MeRIP-seq技術(shù)利用m⁶A特異性抗體富集發(fā)生m⁶A修飾的RNA片段（包括mRNA、lncRNA等rRNA去除所有RNA），結(jié)合高通量測序，可以對RNA上的m⁶A修飾進行定位與定量，總RNA起始量可降低至10μg，最低僅需1μg總RNA。廣泛應用于組織發(fā)育、干細胞自我更新和分化、熱休克或DNA損傷響應、癌癥發(fā)生與發(fā)展、藥物響應等研究領域；可應用于動物、植物、細胞及組織的m⁶A檢測。

大樣本量m⁶A-QTL性狀關(guān)聯(lián)分析，傳統(tǒng)MeRIP單個樣品價格高，通常難以承擔。易基因開發(fā)建立MeRIP-seq2技術(shù)，顯著提成IP平行性，實現(xiàn)不同樣本間相對定量，降低檢測成本。

易基因提供適用于不同科研需求的MeRIP技術(shù)：

• m⁶A甲基化-常量mRNA 甲基化測序（MeRIP-seq）
• m⁶A甲基化-常量mRNA +lncRNA甲基化測序（lnc-MeRIP-seq）
• m⁶A甲基化-微量mRNA +lncRNA甲基化測序（Micro-lnc-MeRIP-seq）
• 高通量m⁶A甲基化-常量mRNA甲基化測序（MeRIP-seq2）

技術(shù)優(yōu)勢：

• 起始量低：樣本起始量可降低至10-20μg，最低僅需1μg總RNA；
• 轉(zhuǎn)錄組范圍內(nèi)：可以同時檢測mRNA和lncRNA；
• 樣本要求：可用于動物、植物、細胞及組織的m⁶A檢測；
• 重復性高：IP富集重復性高，最大化降低抗體富集偏差；
• 應用范圍廣：廣泛應用于組織發(fā)育、干細胞自我更新和分化、熱休克或DNA損傷響應、癌癥的發(fā)生與發(fā)展、藥物響應等研究領域。

研究方向：

m⁶A甲基化目前主要運用在分子機制的理論性研究

• 疾病發(fā)生發(fā)展：腫瘤、代謝疾?。ㄈ绶逝?span>/糖尿?。?、神經(jīng)和精神疾?。ㄈ绨柶澓ＤY/抑郁癥）、炎癥…
• 發(fā)育和分化：早期胚胎發(fā)育、個體/組織/器官生長發(fā)育、干細胞分化與命運決定、衰老
• 環(huán)境暴露與響應：污染、抗逆、生活方式

 

關(guān)于m⁶A甲基化研究思路

（1）整體把握m⁶A甲基化圖譜特征：m⁶A peak數(shù)量變化、m⁶A修飾基因數(shù)量變化、單個基因m⁶A peak數(shù)量分析、m⁶A peak在基因元件上的分布、m⁶A peak的motif分析、m⁶A peak修飾基因的功能分析

（2）篩選具體差異m⁶A peak和基因：差異m⁶A peak鑒定、非時序數(shù)據(jù)的分析策略、時序數(shù)據(jù)的分析策略、差異m⁶A修飾基因的功能分析、差異m⁶A修飾基因的PPI分析、候選基因的m⁶A修飾可視化展示

（3）m⁶A甲基化組學&轉(zhuǎn)錄組學關(guān)聯(lián)分析：Meta genes整體關(guān)聯(lián)、DMG-DEG對應關(guān)聯(lián)、m⁶A修飾目標基因的篩選策略

（4）進一步驗證或后期試驗

易基因科技提供全面的RNA甲基化研究整體解決方案，詳詢0755-28317900。

參考文獻：

McFadden MJ, McIntyre ABR, Mourelatos H, Abell NS, Gokhale NS, Ipas H, Xhemal?e B, Mason CE, Horner SM. Post-transcriptional regulation of antiviral gene expression by N6-methyladenosine. Cell Rep. 2021 Mar 2;34(9):108798.

 

 

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